Table d'hyperaccumulateurs – 3

Un article de Wikipédia, l'encyclopédie libre.

Cette page est une extension de l'article phytoremédiation.

Liens vers les autres sections de la liste:

Cliquer sur ce lien pour la Table d'hyperaccumulateurs – 1 : Al, Ag, As, Be, Cr, Cu, Mn, Hg, Mo, Naphtalène, Pb, Pd, Pt, Se, Zn
Cliquer sur ce lien pour la Table d'hyperaccumulateurs – 2 : Nickel.

[modifier] Table d'hyperaccumulateurs - 3

**Charte de toxines et des plantes traitantes – taux d'accumulation pour Pd, Pt, Pb, Pu, Ra, Se, Zn, Radionucléides, Hydrocarbures et Solvants organiques**
Toxine	Critères d'accumulation	Nom latin	Nom commun	H-Hyperaccumulateur ou A-Accumulateur P-Précipitateur T-Tolérant	Notes	Sources
Pd-Palladium	xxx	xxx	xxx	xxx	pas de cas relevé	^[1]
Pt-Platine	xxx	xxx	xxx	xxx	pas de cas relevé	^[2]
Pb-Plomb	A-	Agrostis castellana	Agrostide de Castille, Agrostis de Castille	Al(A), As(H), Mn(A), Zn(A)	Origine Portugal	^[3]
Pb-Plomb	xxx	Ambrosia artemisiifolia	Ragweed	xxx	xxx	^[4]
Pb-Plomb	xxx	Armeria maritima	Seapink Thrift	xxx	xxx	^[4]
Pb-Plomb	xxx	Athyrium yokoscense	Fougère	Cd(A), Cu(H), Zn(H)	Origine Japon	^[3]
Pb-Plomb	(A)	Azolla filiculoides	Azolla fausse Filicule	Cu(A), Ni(A), Mn(A)	Origine Afrique; espèce aquatique flottante	^[3]
Pb-Plomb	A-	Bacopa monnieri	Smooth water hyssop	Cd(H), Cu(H), Cr(H), Hg(A)	Origine Inde; espèce aquatique émergente	^[3],^[5]
Pb-Plomb	xxx	Brassica juncea	Chou faux Jonc ou Moutarde brune	Hyperaccumulateur. Cd(A), Cr(A), Cu(H), Ni(H), Pb(H), Pb(P), Ur(A), Zn(H)	79 cas relevés. Phytoextraction	^[2],^[3],^[4],^[6],^[7],^[8],^[9],^[10],^[11]
Pb-Plomb	xxx	Brassica napus	Colza	Ag, Cr, Hg, Se, Zn	Phytoextraction	^[4],^[6]
Pb-Plomb	xxx	Brassica oleracea	Kale et Chou ornemental, Broccoli	xxx	xxx	^[4]
Pb-Plomb	H-	Callisneria Americana	Tape Grass	Cd(H), Cr(A), Cu(H)	Origines Europe et Afrique du Nord; extensément cultivé dans l'industrie des aquariums	^[3]
Pb-Plomb	xxx	Eichhornia crassipes	Jacinthe d'eau (?)	Cd(H), Cr(A), Cu(A), Hg(H), Zn(A). Also Cs, Sr, U^[12], et pesticides^[13].	Pantropical/Subtropical, "herbe à problème"	^[3]
Pb-Plomb	xxx	Festuca ovina	Blue Sheep Fescue	xxx	xxx	^[4]
Pb-Plomb	xxx	Helianthus annuus	Tournesol	xxx	Phytoextraction & rhizofiltration	^[1],^[3],^[4],^[6],^[11]
Pb-Plomb	H-	Hydrilla verticallata	Hydrilla	Cd(H), Cr(A), Hg(H)	Origine Asie du S-E; introduite aux E.-U. d'Amérique, envahit les eaux chaudes de ce pays (The troublesome weed, l'herbe à problème)	^[3]
Pb-Plomb	H-	Lemna minor	Petite Lenticule, Petite Lentille-d'eau	Cd(H), Cu(H), Zn(A)	Origine Amérique du Nord, largement répandue	^[3]
Pb-Plomb	xxx	Salix viminalis L.	Osier vert, Saule des vanniers	Cd, U^[6], Ag, Cr, Hg, Se, Zn^[3]. MTBE^[6].	xxx	^[1]
Pb-Plomb	H-	Salvinia molesta	Water Fern	Cr(H), Ni(H), Pb(H), Zn(A)	Origine Inde	^[3]
Pb-Plomb	H-	Spirodela polyrhiza	Lenticule ( Lentille-d'eau, Spirodèle) à nombreuses racines	Cd(H), Cr(H), Ni(H), Zn(A)	xxx	^[2],^[3],^[14]
Pb-Plomb	xxx	Thlaspi caerulescens	Tabouret bleuâtre, Tabouret des bois	Cd(H), Cr(A), Co(H), Cu(H), Mo(H), Ni(H), Zn(H)	phytoextraction.	^[2],^[3],^[6],^[8],^[9],^[10],^[15]
Pb-Plomb	xxx	Thlaspi rotundifolium	Pennycress	xxx	xxx	^[4]
Pb-Plomb	xxx	Triticum aestivum	Wheat (scout)	xxx	xxx	^[4]
Pu-238	xxx	Acer Rubrum	Érable rouge	Cs-137, Sr-90	Arbre accumulant des radionucléides	^[12]
Pu-238	xxx	Liquidambar stryaciflua	Liquidambar	Cs-137, Sr-90	Arbre accumulant des radionucléides	^[12]
Pu-238	xxx	Liriodendron tulipfera	Tulipier	Cs-137, Sr-90	Arbre accumulant des radionucléides	^[12]
Ra-Radium	xxx	xxx	xxx	xxx	pas de cas relevé	^[2]
Se-Sélénium	xxx	Brassica juncea	Chou faux Jonc ou Moutarde brune	xxx	Bactéries de la rhizosphère enhancent accumulation^[16]	^[6]
Se-Sélénium	xxx	Brassica napus	Colza	Ag, Cr, Hg, Pb, Zn	Phytoextraction	^[4],^[6]
Sélénium-Se	1.9% de la masse totale de Se fournie est accumulé dans les tissus de C. canescens; 0.5% is removed via biological volatilization^[17].	Chara canescens Desv. & Lois	[Muskgrass]	xxx	Chara traitée avec du sélénite contient 91% du Se total sous des formes organiques (sélénoéthers and disélénides), comparé à 47% pour le [muskgrass] traité avec du sélénate.	^[18]
Se-Sélénium	xxx	Kochia scoparia	Bassia à balais, Bassie à balais, Belvédère	Pb, U^[1]. Ag, Cr, Hg, Zn	Perchlorate (wetland halophytes). Phytoextraction	^[3],^[6]
Se-Sélénium	xxx	Salix Spp.	Osier – Saule	Cd, Pb, U^[6], Pb^[1]. Ag, Cr, Hg, Zn^[3]. MTBE^[6].	Perchlorate (wetland halophytes)^[6]. Phytoextraction	^[6]
Sr90-Strontium	xxx	Acer Rubrum	Érable rouge	Cs-137, Pu-238	Arbre accumulant des radionucléides	^[12]
Sr90-Strontium	xxx	Brassicaeae	xxx	Hyperaccumulators: Cd, Cs, Ni, Zn	Phytoextraction	^[6]
Sr90-Strontium	xxx	Chenopodiaceae	Beet, Quinoa, Russian thistle	Sr-90, Cs-137	Accumule des radionucléides	^[12]
Sr90-Strontium	xxx	Eichhornia crassipes	Jacinthe d'eau (?)	Cs-137, U-234, 235, 238. Also Cd(H), Cr(A), Cu(A), Hg(H), Pb, Zn(A)^[3], et pesticides^[13].	En pH de 9, accumule de fortes concentrations, apprx. 80 à 90% dans les racines^[19].	^[12]
Sr90-Strontium	xxx	Eucalyptus tereticornis	Forest redgum	Cs-137	Arbre accumulant des radionucléides	^[12]
Sr90-Strontium	H-	Helianthus annuus	Tournesol	xxx	Taux d'absorption élevé. Phytoextraction & rhizofiltration. Accumule des radionucléides^[11]	^[2],^[3],^[6],^[12]
Sr90-Strontium	xxx	Liquidambar stryaciflua	Liquidambar	Cs-137, Pu-238	Arbre accumulant des radionucléides	^[12]
Sr90-Strontium	xxx	Liriodendron tulipfera	Tulipier	Cs-137, Pu-238	Arbre accumulant des radionucléides	^[12]
Sr90-Strontium	xxx	Lolium multiflorum	Ray-grass d'Italie	Ce	Associations mycorhizales: accumule plus de césium-137 and strontium-90 quand élevé dans du Sphagnum peat que dans tout autre médium, y compris argile, sable, [silt], et compost^[20].	^[12]
Sr90-Strontium	xxx	Lolium perenne	Ray-grass anglais, Ray-grass commun	Ce	Accumule des radionucléides	^[12]
Sr90-Strontium	1.5-4.5 % dans ses branches	Pinus ponderosa, Pinus radiata	Ponderosa pine, Pin de Monterey	Cs-137	Arbres accumulant des radionucléides dans leurs branches^[19].	^[12]
Sr90-Strontium	xxx	Umbelliferae	xxx	xxx	Accumule des radionucléides	^[12]
Sr90-Strontium	xxx	Legume family	xxx	xxx	Accumule des radionucléides	^[12]
Sr90-Strontium	A-?	xxx	xxx	xxx	xxx	^[2]
U-Uranium	xxx	Amaranthus	Amaranthe	Cd(A), Cr(A), Cu(H), Ni(H), Pb(H), Pb(P), Zn(H).	Acide citrique chélateur^[1], et voir note. Césium: concentration maximum atteinte à 35 jours de croissance^[21].	^[3],^[12]
U-Uranium	xxx	Brassica juncea, Brassica chinensis, Brassica narinosa	xxx	Cd(A), Cr(A), Cu(H), Ni(H), Pb(H), Pb(P), Zn(H)	Acide citrique en chélateur^[1] multiplie jusqu'à 1000 fois l'absporbtion d'U^[22], et voir note.	^[3],^[6],^[12]
U-Uranium	xxx	Eichhornia crassipes	Jacinthe d'eau (?)	Cs-137, Sr-90, U-234, 235, 238. Also Cd(H), Cr(A), Cu(A), Hg(H), Pb, Zn(A)^[3], et pesticides^[13].	xxx	^[12]
U-Uranium	95% of U in 24 hours^[21].	Helianthus annuus	Tournesol	xxx	Phytoextraction & rhizofiltration. Accumule des radionucléides^[11]; A un site d'eaux usées contaminé à Ashtabula, Ohio, des plantes de 4 semaines ont pu accumuler plus de 95% de l'U en 24 heures^[21].	^[1],^[2],^[3],^[6],^[12]
U-Uranium	xxx	Juniperus	Juniper	xxx	Accumule les radionucléides dans ses racines^[19]	^[12]
U-Uranium	xxx	Picea mariana	Black Spruce	xxx	Arbre accumulant des radionucléides dans ses branches^[19]	^[12]
U-Uranium	xxx	Quercus	Chêne	xxx	Arbre accumulant des radionucléides dans ses racines^[19]	^[12]
U-Uranium	xxx	xxx	Russian Thistle (tumble weed)	xxx	xxx	??
U-Uranium	xxx	Salix viminalis L.	Osier vert, Saule des vanniers	Cd, Pb, U^[6]. Also Ag, Cr, Hg, Se, Zn^[3]. MTBE^[6].	xxx	^[1],^[6]
U-Uranium	xxx	Silence eucapalis	Bladder campion	xxx	xxx	??
U-Uranium	xxx	Zea Mays	Maïs doux	Cs	accumule le Césium dans les racines.	^[12]
U-Uranium	A-?	xxx	xxx	xxx	xxx	^[2]
Zn-Zinc	A-	Agrostis castellana	Agrostide de Castille, Agrostis de Castille	As(H), Pb(A), Mn(A), Al(A)	Origine Portugal	^[3]
Zn-Zinc	xxx	Athyrium yokoscense	Fougère	Cd(A), Cu(H), Pb(H)	Origine Japon	^[3]
Zn-Zinc	xxx	Brassicaeae	xxx	Hyperaccumulators: Cd, Cs, Ni, Sr	Phytoextraction	^[6]
Zn-Zinc	xxx	Brassica juncea L.	Chou faux Jonc ou Moutarde brune	Cd(A), Cr(A), Cu(H), Ni(H), Pb(H), Pb(P), Urr(A)	Les larves de Pieris brassicae (Piéride du Chou) refusent toute ingestion de ses feuilles à taux en zinc élevé. (Pollard et Baker, 1997)	^[3],^[6],^[7]
Zn-Zinc	xxx	Brassica napus	Colza	Ag, Cr, Hg, Pb, Se	Phytoextraction	^[4],^[6]
Zn-Zinc	xxx	Eichhornia crassipes	Jacinthe d'eau (?)	Cd(H), Cr(A), Cu(A), Hg(H), Pb(H). Also Cs, Sr, U^[12], et pesticides^[13].	Pantropical/Subtropical, "herbe à problème"	^[3]
Zn-Zinc	xxx	Helianthus annuus	Tournesol	xxx	Phytoextraction & rhizofiltration	^[1],^[6]
Zn-Zinc	xxx	Kochia scoparia	Bassia à balais, Bassie à balais, Belvédère	Pb, U^[1]. Ag, Cr, Hg, Se	Perchlorate (wetland halophytes). Phytoextraction	^[3],^[6]
Zn-Zinc	A-	Lemna minor	Petite Lenticule, Petite Lentille-d'eau	Cd(H), Cu(H), Pb(H)	Origine Amérique du Nord, largement répandue	xxx
Zn-Zinc	xxx	Salix Spp.	Osier – Saule	Perchlorate (wetland halophytes). Ag, Cr, Hg, Se. Aussi Pb, U^[6],^[1]. Cd, Pb, U^[6]. MTBE^[6].	Phytoextraction. Perchlorate (wetland halophytes).	^[3],^[6]
Zn-Zinc	xxx	Salix viminalis L.	Osier vert, Saule des vanniers	Pb, U^[6]. Ag, Cr, Hg, Se, Zn^[3]. MTBE^[6].	Phytoextraction. Perchlorate (wetland halophytes).	^[1]
Zn-Zinc	A-	Salvinia molesta	Water Fern	Cr(H), Ni(H), Pb(H), Zn(A)	Origine Inde	^[3]
Zn-Zinc	1400	Silene vulgaris (Moench) Garcke (Caryophyllaceae)	xxx	xxx	xxx	Ernst et al. (1990)
Zn-Zinc	A-	Spirodela polyrhiza	Lenticule ( Lentille-d'eau, Spirodèle) à nombreuses racines	Cd(H), Ni(H), Pb(H)	xxx	^[2],^[3],^[14]
Zn-Zinc	10,000	Thlaspi caerulescens	Tabouret bleuâtre, Tabouret des bois	Cd(H), Cr(A), Co(H), Cu(H), Mo, Ni(H), Pb(H)	48 plantes notées pour Zn. Thlaspi c. acidifierait sa rhizosphère, ce qui faciliterait l'absorption en solubilisant les métaux^[8]	^[2],^[3],^[6],^[15]
Benzène	xxx	Ficus elastica	xxx	xxx	xxx	^[23]
Benzène	xxx	Kalanchoe blossfeldiana	xxx	xxx	semble absorber le benzène de préférence au toluène.	^[23]
Benzène	xxx	Pelargonium domesticum	xxx	xxx	xxx	^[23]
DDT	xxx	Phanerochaete chrysosporium	White rot fungus	, BTEX, Dieldrin, Endodulfan, Pentachloronitro-benzène, PCP	Phytostimulation	^[6]
Fluoranthène	xxx	Cyclotella caspia	xxx	xxx	Taux approximatif de biodégradation au 1er jour: 35%; au 6e jour: 85% (taux de dégradation physique 5,86% seulement).	^[24]
Hydrocarbures	xxx	Cynodon dactylon (L.) Pers.	bermuda grass	xxx	reduction moyenne de 68% après 1 an	^[25]
Hydrocarbures	xxx	Festuca arundinacea	Tall fescue	xxx	reduction moyenne de 62% après 1 an^[25]	^[26]
Hydrocarbures	xxx	Pinus	Pins	TCE et produits dérivés, solvants organiques, MTBE	Phytocontainment	^[6]
Hydrocarbures	xxx	Salix spp.	Osier-Saule	TCE et produits dérivés, solvants organiques, MTBE. Pb, U^[1]. Ag, Cr, Hg, Se, Zn^[3]. MTBE^[6].	Phytocontainment	^[6]
MTBE	xxx	Pinus	Pins	TCE et produits dérivés, solvants organiques, petroleum [hydrocarbure]s	Phytocontainment	^[6]
MTBE	xxx	Salix spp.	Osier-Saule	TCE et produits dérivés, solvants organiques, petroleum [hydrocarbure]s. Pb, U^[1]. Ag, Cr, Hg, Se, Zn^[3]. MTBE^[6].	Phytocontainment	^[6]
Pentachloronitro-benzène	xxx	Phanerochaete chrysosporium	White rot fungus	DDT, BTEX, Dieldrin, Endodulfan, PCP	Phytostimulation	^[6]
PCB	xxx	Rosa spp.	Paul’s Scarlet Rose	xxx	Phytodégradation	^[6]
PCP	xxx	Phanerochaete chrysosporium	White rot fungus	DDT, BTEX, Dieldrin, Endodulfan, Pentachloronitro-benzène	Phytostimulation	^[6]
Potassium ferrocyanide	8.64% to 15.67% of initial mass	Salix babylonica L., Salix matsudana Koidz, Salix matsudana Koidz x Salix alba L.	Weeping willow, Hankow willow, Hybrid willows	Pb, U^[1]. Ag, Cr, Hg, Se, Zn^[3]. MTBE^[6].	No ferrocyanide in air from plant transpiration.	^[27]
Radionucléides	xxx	Tradescantia bracteata	Spiderworts	xxx	Indicateur pour radionucléides: les stamens (normalement bleu ou bleu-pourpre) deviennent roses quand exposés aux radionucléides	^[12]
Solvants organiques	xxx	Pinus	Pins	TCE et by-products, MTBE, petroleum [hydrocarbure]s	Phytocontainment	^[6]
Solvants organiques	xxx	Salix spp.	Osier-Saule	TCE et by-products, MTBE, petroleum [hydrocarbure]s^[1]. Ag, Cr, Hg, Se, Zn^[3]. Pb, U. MTBE^[6].	Phytocontainment	^[6]
TCE-trichloroéthylène	xxx	Chlorophytum comosum	xxx	xxx	la présence de TCE diminuerait le taux d'élimination du benzène et du méthane.	^[23]
TCE-trichloroéthylène et by-products	xxx	Pinus	Pins	Solvants organiques, MTBE, petroleum [hydrocarbure]s	Phytocontainment	^[6]
TCE-trichloroéthylène et by-products	xxx	Salix spp.	Osier-Saule	Solvants organiques, MTBE, petroleum [hydrocarbure]s. Aussi Pb, U^[1] et Ag, Cr, Hg, Se, Zn^[3]. MTBE^[6].	Phytocontainment	^[6]
XXX	XXX	xxx	Bananier	xxx	Système de racines extra-dense, bon pour rhizofiltration ^[28]	xxx
xxx	xxx	xxx	Papyrus	xxx	Système de racines extra-dense, bon pour rhizofiltration^[28]	xxx
xxx	xxx	xxx	Taros	xxx	Système de racines extra-dense, bon pour rhizofiltration^[28]	xxx
xxx	xxx	Brugmansia spp.	Angel's trumpet	xxx	Plante marécageuse supportant des milieux semi-anaérobiques, employées dans les bassins de traitement des eaux usées^[29] .	xxx
xxx	xxx	Caladium	xxx	xxx	Plante marécageuse supportant des milieux semi-anaérobiques, employées dans les bassins de traitement des eaux usées^[29].	xxx
xxx	xxx	Caltha palustris	Populage des marais	xxx	Plante marécageuse supportant des milieux semi-anaérobiques, employées dans les bassins de traitement des eaux usées^[29].	xxx
xxx	xxx	Iris pseudacorus	Iris des marais, Iris jaune	xxx	Plante marécageuse supportant des milieux semi-anaérobiques, employées dans les bassins de traitement des eaux usées^[29].	xxx
xxx	xxx	Mentha aquatica	Menthe aquatique	xxx	Plante marécageuse supportant des milieux semi-anaérobiques, employées dans les bassins de traitement des eaux usées^[29].	xxx
xxx	xxx	Scirpus lacustris	Jonc des marais?	xxx	Plante marécageuse supportant des milieux semi-anaérobiques, employées dans les bassins de traitement des eaux usées^[29].	xxx
xxx	xxx	Typha latifolia	Massette à larges feuilles	xxx	Plante marécageuse supportant des milieux semi-anaérobiques, employées dans les bassins de traitement des eaux usées^[29].	xxx
xxx	xxx	xxx	Peuplier hydride, Willow, Cottonwood, Aspen	xxx	Croissance rapide, robuste, facile à planter et à maintenir, utilise beaucoup d'eau par évapotranspiration, et transforme les contaminants concernés en produits non-toxiques ou moins toxiques.	^[11]
xxx	xxx	xxx	xxx	xxx	xxx	xxx

[modifier] Notes

L'uranium est parfois symbolisé par Ur au lieu de U. Selon Ulrich Schmidt^[1] et d'autres, la concentration des plantes en uranium est considérablement augmentée par une application d'acide citrique qui le solubilise.
Radionuclides: Cs137 et Sr90 restent dans les 40 cms de surface du sol même en cas de pluies intenses, et le taux de migration des quelques centimètres de surface est lent^[30].
Radionuclides: Les plantes avec des associations mycorhizales sont souvent plus efficaces à traiter les radionucléides qu'en l'absence de ces associations^[31]. Voir aussi la note sur Lolium multiflorum dans Paasikallio 1984^[20].
Radionuclides: En général, les sols contenant plus de matière organique permettront plus d'accumulation de radionucléides^[30]. L'absorption est aussi favorisée par une plus grande capacité d'échange de cations pour la disponibilité de Sr-90, et une saturation moins élevée des bases (alcalins) pour l'absorption de Sr-90 et Cs-137^[30].
Radionuclides: Fertiliser le sol avec du nitrogène si nécessaire, augmentera indirectement l'absorption de radionucléides en aidant la croissance de la plante en général et des racines en particulier. Mais certains 'fertilisants' comme K ou Ca disputent aux radionucléides les sites d'échange de cations, et n'augmenmteront pas la prise des radionucléides^[30].

[modifier] Références d'utilisations et notes sur les plantes

A noter que les références sont à ce stade principalement des résultats d'études et d'expérimentations.

↑ ^1,00 ^1,01 ^1,02 ^1,03 ^1,04 ^1,05 ^1,06 ^1,07 ^1,08 ^1,09 ^1,10 ^1,11 ^1,12 ^1,13 ^1,14 ^1,15 ^1,16 ^1,17 ^1,18 [1] Ulrich Schmidt, Enhancing Phytoextraction: The Effect of Chemical Soil Manipulation on Mobility, Plant Accumulation, and Leaching of Heavy Metals.
↑ ^2,00 ^2,01 ^2,02 ^2,03 ^2,04 ^2,05 ^2,06 ^2,07 ^2,08 ^2,09 ^2,10 McCutcheon & Schnoor 2003, Phytoremediation. New Jersey, John Wiley & Sons. pg 891
↑ ^3,00 ^3,01 ^3,02 ^3,03 ^3,04 ^3,05 ^3,06 ^3,07 ^3,08 ^3,09 ^3,10 ^3,11 ^3,12 ^3,13 ^3,14 ^3,15 ^3,16 ^3,17 ^3,18 ^3,19 ^3,20 ^3,21 ^3,22 ^3,23 ^3,24 ^3,25 ^3,26 ^3,27 ^3,28 ^3,29 ^3,30 ^3,31 ^3,32 ^3,33 ^3,34 ^3,35 ^3,36 ^3,37 McCutcheon & Schnoor 2003, Phytoremediation. New Jersey, John Wiley & Sons. pg 898
↑ ^4,00 ^4,01 ^4,02 ^4,03 ^4,04 ^4,05 ^4,06 ^4,07 ^4,08 ^4,09 ^4,10 [2] A Resource Guide: The Phytoremediation of Lead to Urban, Residential Soils. Site adapté d'un rapport de la Northwestern University écrit par Joseph L. Fiegl, Bryan P. McDonnell, Jill A. Kostel, Mary E. Finster, et Dr. Kimberly Gray
↑ Gurta et al. 1994
↑ ^6,00 ^6,01 ^6,02 ^6,03 ^6,04 ^6,05 ^6,06 ^6,07 ^6,08 ^6,09 ^6,10 ^6,11 ^6,12 ^6,13 ^6,14 ^6,15 ^6,16 ^6,17 ^6,18 ^6,19 ^6,20 ^6,21 ^6,22 ^6,23 ^6,24 ^6,25 ^6,26 ^6,27 ^6,28 ^6,29 ^6,30 ^6,31 ^6,32 ^6,33 ^6,34 ^6,35 ^6,36 ^6,37 ^6,38 ^6,39 ^6,40 ^6,41 ^6,42 ^6,43 ^6,44 ^6,45 ^6,46 ^6,47 ^6,48 McCutcheon & Schnoor 2003, Phytoremediation. New Jersey, John Wiley & Sons. pg 19
↑ ^7,0 ^7,1 [3] Lindsay E. Bennetta, Jason L. Burkheada, Kerry L. Halea, Norman Terryb, Marinus Pilona et Elizabeth A. H. Pilon-Smits, Analysis of Transgenic Indian Mustard Plants for Phytoremediation of Metal-Contaminated Mine Tailings'.
↑ ^8,0 ^8,1 ^8,2 [4] T.A. Delorme, J.V. Gagliardi, J.S. Angle, et R.L. Chaney, Influence of the zinc hyperaccumulator Thlaspi caerulescens J. & C. Presl. and the nonmetal accumulator Trifolium pratense L. on soil microbial populations. Conseil National de Recherches du Canada.
↑ ^9,0 ^9,1 Baker & Brooks, 1989
↑ ^10,0 ^10,1 [5] E. Lombi, F.J. Zhao, S.J. Dunham et S.P. McGrath, Phytoremediation of Heavy Metal, Contaminated Soils, Natural Hyperaccumulation versus Chemically Enhanced Phytoextraction.
↑ ^11,0 ^11,1 ^11,2 ^11,3 ^11,4 Phytoremediation Decision Tree, ITRC
↑ ^12,00 ^12,01 ^12,02 ^12,03 ^12,04 ^12,05 ^12,06 ^12,07 ^12,08 ^12,09 ^12,10 ^12,11 ^12,12 ^12,13 ^12,14 ^12,15 ^12,16 ^12,17 ^12,18 ^12,19 ^12,20 ^12,21 ^12,22 ^12,23 ^12,24 ^12,25 [6], Phytoremediation of radionuclides
↑ ^13,0 ^13,1 ^13,2 ^13,3 [7] Lan, Jun-kang, Recent developments of phytoremediation.
↑ ^14,0 ^14,1 Srivastav 1994
↑ ^15,0 ^15,1 [8] Majeti Narasimha Vara Prasad, Nickelophilous plants and their significance in phytotechnologies. Braz. J. Plant Physiol. Vol.17 no.1 Londrina Jan./Mar. 2005
↑ [9] Mark P. de Souza, Dara Chu, May Zhao, Adel M. Zayed, Steven E. Ruzin, Denise Schichnes, et Norman Terry,": Rhizosphere Bacteria Enhance Selenium Accumulation and Volatilization by Indian mustard. journal "Plant Physiology.
↑ Concentration moyenne de l'approvisionnement en Se sur 24 jours: 22 µg L-1
↑ [10] Z.-Q. Lin, M. de Souza, I. J. Pickering et N. Terry, Evaluation of the macroalgua Muskgrass for the phytoremediation of Selenium-contaminated Agricultural drainage water by microcosms. Journal of Environmental Quality 2002. 31:2104-2110
↑ ^19,0 ^19,1 ^19,2 ^19,3 ^19,4 Negri, C. M. et R. R. Hinchman, 2000. The use of plants for the treatment of radionuclides. Chapter 8 of Phytoremediation of toxic metals: Using plants to clean up the environment, ed. I. Raskin and B. D. Ensley. New York: Wiley-Interscience Publication. Cité dans Phytoremediation of Radionuclides.
↑ ^20,0 ^20,1 A. Paasikallio, The effect of time on the availability of strontium-90 and cesium-137 to plants from Finnish soils. Annales Agriculturae Fenniae, 1984. 23: 109-120. Cité dans Westhoff99.
↑ ^21,0 ^21,1 ^21,2 Dushenkov, S., A. Mikheev, A. Prokhnevsky, M. Ruchko, and B. Sorochinsky, Phytoremediation of Radiocesium-Contaminated Soil in the Vicinity of Chernobyl, Ukraine. Environmental Science and Technology 1999. 33, no. 3 : 469-475. Cité dans Phytoremediation of radionuclides.
↑ Huang, J. W., M. J. Blaylock, Y. Kapulnik, and B. D. Ensley, Phytoremediation of Uranium-Contaminated Soils: Role of Organic Acids in Triggering Uranium Hyperaccumulation in Plants. Environmental Science and Technology 1998. 32, no. 13 : 2004-2008. Cité dans Phytoremediation of radionuclides.
↑ ^23,0 ^23,1 ^23,2 ^23,3
↑ [11]. Yu Liu, Tian-Gang Luan, Ning-Ning Lu, Chong-Yu Lan, Toxicity of Fluoranthene and Its Biodegradation by Cyclotella caspia Alga. Journal of Integrative Plant Biology, Fev. 2006
↑ ^25,0 ^25,1 [12] S.L. Hutchinson, M.K. Banks et A.P. Schwab, Phytoremediation of Aged Petroleum Sludge, Effect of Inorganic Fertilizer.
↑ [13] Steven D. Siciliano, James J. Germida, Kathy Banks, et Charles W. Greer, Changes in Microbial Community Composition and Function during a Polyaromatic Hydrocarbon Phytoremediation Field Tria.
↑ [14] Yu XZ, Zhou PH et Yang YM, The potential for phytoremediation of iron cyanide complex by willows.
↑ ^28,0 ^28,1 ^28,2 [15], "Living Machines". Erik Alm décrit ces plantes comme des “curiosités” à cause de leurs système de racines très fourni même dans des environnements si riches en nutriments. En ce qui concerne le traitement des eaux usées, la masse du système de racines est un facteur primordial: plus il y a de racines, plus la surface d'adsorption ou absorption est grande; de plus les racines plus denses offrent un filtre plus fin aux impuretés de plus grosse taille.
↑ ^29,0 ^29,1 ^29,2 ^29,3 ^29,4 ^29,5 ^29,6 [16], "Living Machines". Ces plantes marécageuses supportent des milieux semi-anaérobiques, et sont employées dans les bassins de traitement des eaux usées
↑ ^30,0 ^30,1 ^30,2 ^30,3 [17] J.A. Entry, N.C. Vance, M.A. Hamilton, D. Zabowski, L.S. Watrud, D.C. Adriano, Phytoremediation of soil contaminated with low concentrations of radionuclides. Water, Air, and Soil Pollution, 1996. 88: 167-176. Cité dans Westhoff99.
↑ J.A. Entry, P. T. Rygiewicz et W.H. Emmingham. Strontium-90 uptake by Pinus ponderosa and Pinus radiata seedlings inoculated with ectomycorrhizal fungi. Environmental Pollution 1994, 86: 201-206. Cité dans Westhoff99.